LINEAR GROWTH AND PASSIVATION OF ACTIVE CELLS OF MICROORGANISM GROWING CULTURE
Authors:
1.
All-Russian Scientific Research Dairy Institute
2.
All-Russian Scientific Research Dairy Institute
Type:
Article
Pages:
from 97
to 106
Status:
Published
Received:
25.12.2014
Accepted:
25.12.2014
Published:
25.12.2014
Subject area:
UDK 579.8
UDK 66 Химическая технология. Химическая промышленность. Родственные отрасли
UDK 60 Прикладные науки. Общие вопросы
UDK 66 Химическая технология. Химическая промышленность. Родственные отрасли
UDK 60 Прикладные науки. Общие вопросы
Language:
Russian
Keywords:
Linear growth phase, lactobacillus, active and passive (latent) cells, lactic acid forming rate
Abstract (English):
The linear growth of microorganisms is insufficiently studied by microbiology. The main characteristic sign of linear growth is considered constancy (immutability) of growth rate of culture during several hours. Such a characteristic of linear growth is lopsided, insufficient and inaccurate and should be reviewed. The purpose of the paper is to give an objective, detailed and comprehensive description of the linear growth of microorganisms. The results of our theoretical and experimental investigations show that a regime of linear growth is a natural but not anomalous one; microorganism growth in lag-phase period is proceeding in the regime of linear growth; the rate of the culture linear growth is changed stepwise during cultivation; after stepped (bound) changes of growth rate up to the new invariable level it again remains invariable in the frames of a new step up to the next stepped change of the growth rate; duration of every following step of the linear growth (with new constant growth rate) is as a rule shorter than the previous one and can make up several minutes but not hours. In addition, it is found that linear growth mode is really a mode of stepped growth, the growth of culture remains linear (constant growth rate) only within the borders of each individual stage of growth. The mechanism of active cells growth and passivation of culture growing in linear growth regime as well as a new mechanism of passive cells activation of the same culture have been theoretically substantiated. A new method of active (growing) cells concentration of lactobacillus cells determination in cultural medium according to the culture acid forming rate has been proposed. For the first time gradually changing concentrations of active and passive (latent) Lac.lactis cells in cultural medium at all stages of cultivation have been analyzed in detail.
The linear growth of microorganisms is insufficiently studied by microbiology. The main characteristic sign of linear growth is considered constancy (immutability) of growth rate of culture during several hours. Such a characteristic of linear growth is lopsided, insufficient and inaccurate and should be reviewed. The purpose of the paper is to give an objective, detailed and comprehensive description of the linear growth of microorganisms. The results of our theoretical and experimental investigations show that a regime of linear growth is a natural but not anomalous one; microorganism growth in lag-phase period is proceeding in the regime of linear growth; the rate of the culture linear growth is changed stepwise during cultivation; after stepped (bound) changes of growth rate up to the new invariable level it again remains invariable in the frames of a new step up to the next stepped change of the growth rate; duration of every following step of the linear growth (with new constant growth rate) is as a rule shorter than the previous one and can make up several minutes but not hours. In addition, it is found that linear growth mode is really a mode of stepped growth, the growth of culture remains linear (constant growth rate) only within the borders of each individual stage of growth. The mechanism of active cells growth and passivation of culture growing in linear growth regime as well as a new mechanism of passive cells activation of the same culture have been theoretically substantiated. A new method of active (growing) cells concentration of lactobacillus cells determination in cultural medium according to the culture acid forming rate has been proposed. For the first time gradually changing concentrations of active and passive (latent) Lac.lactis cells in cultural medium at all stages of cultivation have been analyzed in detail.
Keywords:
Linear growth phase, lactobacillus, active and passive (latent) cells, lactic acid forming rate
Linear growth phase, lactobacillus, active and passive (latent) cells, lactic acid forming rate
Введение В 1949 г. при изучении роста культуры Bacillus subtilis в питательной среде Р. Schaeffer [1] в единственном эксперименте обнаружил, что скорость роста культуры оставалась неизменной на протяжении более 4 часов. Это противоречило открытому в 1936г. фундаментальному закону экспоненциального роста. Новый, неизвестный ранее режим роста культуры с неизменной скоростью роста, приведенный на рис.1, великий микробиолог Жак Моно (J. Monod) в том же 1949г. назвал линейным ростом [2]. Рост B. subtilis линеен на протяжении 4 часов. Рис. 1 Кривая роста культуры B. subtilis Повторить этот эксперимент не удалось, и все последующие годы Ж. Моно и другие исследователи считали линейный рост аномальным режимом роста культуры. Ж. Моно сразу же дал точную научную интерпретацию нового режима роста [2]. Неизменность скорости роста микроорганизмов при линейном росте культуры, по его мнению, обусловлена неизменной скоростью ферментативного синтеза стрептомицина (потребляемого растущими клетками В. subtilis компонента субстрата, необходимого для их роста, но отсутствующего в питательной среде). Свою интерпретацию Ж.Моно назвал «верной, хотя она и кажется удивительной, необычной» (The interpretation is obvious, albeit surprising). Растущая культура B. subtilis сама продуцирует стрептомицин, необходимый для её роста, посредством ферментативной реакции первого порядка, скорость которой неизменна, и именно поэтому растёт с неизменной скоростью. В конце своего вывода Ж.Моно ещё раз подчеркнул, что именно такое удивительное стечение обстоятельств привело к возникновению этого нового режима (линейного) роста, который своим «необычным» режимом роста дезавуирует самый фундаментальный Закон (экспоненциального) роста [2]. Одновременно Ж.Моно указал, что отмеченное им удивительное стечение обстоятельств (для возникновения линейного роста культуры) можно создать искусственно, путём внесения в культуральную среду с неизменной заданной исследователем скоростью отсутствующего в ней компонента, лимитирующего рост культуры, при избытке остальных компонентов. Такой способ искусственного моделирования и поддержания режима линейного роста культуры, по мнению Ж.Моно, может оказаться полезным микробиологам при изучении последовательных стадий процесса метаболизма при росте микроорганизмов. (Естественный режим линейного роста лактобактерий в молоке не был известен.) В последующие годы микробиологи, следуя этому указанию Ж.Моно, искусственно создавали режим линейного роста исследуемой растущей культуры, обеспечивая неизменность скорости подачи лимитирующего компонента в культуральную среду. Например, С.Дж.Перт в 1972г. поддерживал в своих экспериментах режим линейного роста микроорганизмов путем внесения в культуральную среду с неизменной скоростью (с помощью диффузионной капсулы) лимитирующего компонента питательной среды [3, с.261]. В фундаментальной монографии С.Дж.Перта (и во всех современных учебниках общей микробиологии) нет ни слова о фазе линейного роста микроорганизмов или, например, о том, что естественный рост лактобактерий в молоке протекает в режиме линейного роста, причём экспоненциальный рост культуры отсутствует. Впервые линейный рост как естественный режим роста лактобактерий в период лаг-фазы и в новой фазе линейного роста был выявлен В.А.Марьиным в октябре 2002г. в серии из шести экспериментов с использованием только что изобретённого им нового инструментального рН-метриче-ского способа [4-7]. В результате упомянутой серии экспериментов, которые проанализированы ниже, стало очевидно, что линейный рост лактобактерий - это не аномальный, а, наоборот, естественный режим роста лактобактерий. Автор нового рН-метрического способа убедился, что созданный им способ позволяет детально рассмотреть и проанализировать на рН-метрических кривых мельчайшие детали новой фазы линейного роста; выявить cпецифику неизвестного ранее режима роста культуры (как выяснилось, режима линейного роста) в период лаг-фазы, а также лучше изучить известный режим экспоненциального роста и многое другое (рис.2). Рис. 2. рН-метрическая кривая линейного роста культуры L. Acidophilus. Изменение pH культуральной среды со временем На рис.2 видно, что скорость кислотообразования (∆Аt/Δt) культуры L. acidophilus (в период лаг-фазы) на протяжении 2,5 часа оставалась практически неизменной - 2,4ºТ/ч (что соответствует скорости роста культуры 1,2·108 КОЕ/мл·ч). Даже раскисление культуральной среды раствором аммиака (после 1,5 часа культивирования) до оптимального уровня рН=6,75 не увеличило скорость линейного роста культуры в период лаг-фазы. Согласно результатам наших исследований [8], скорость роста культуры лактобактерий (∆Хt/Δt) прямо пропорциональна одновременной скорости её кислотообразования (∆Аt/Δt) и прямо пропорциональна скорости одновременной убыли рН культуральной среды (-ΔрНt /Δt): (∆Хt /Δt) [КОЕ/мл·ч] = 0,5 ∙108 ·(∆Аt /Δt) [ºТ/ч] = = 0,5 ∙108 ·b·(-ΔрНt /Δt) - формула Марьина.(1) Цели работы: 1. Детально изучить и проанализировать недостаточно изученную специфику режима линейного роста культуры лактобактерий и бифидобактерий, уточнить характер и диапазон изменения скорости роста и кислотообразования микроорганизмов при линейном росте культуры. 2. Теоретически и экспериментально обосновать механизм роста и пассивации активных клеток линейно растущей культуры лактобактерий и механизм наблюдаемой периодической активации пассивных клеток в режиме линейного роста культуры. 3. Показать, что исследователь может и сам намеренно активировать часть пассивных клеток растущей культуры лактобактерий и тем самым существенно повысить скорость её линейного роста, например, путём внесения в культуральную среду добавок щёлочи, повышая рН культуральной среды до оптимального уровня рНопт=6,8. 4. Теоретически и экспериментально обосновать и проанализировать предложенный нами новый способ определения концентрации активных (растущих) клеток лактобактерий в культуральной среде по скорости кислотообразования растущей культуры. Объект и методы исследования Объектом экспериментальных исследований служили основные параметры и режимы линейного и экспоненциального роста лактобактерий в питательных средах, используемых во ВНИМИ для производства жидких и сухих бактериальных концентратов лакто- или бифидобактерий. Жидкую питательную среду после стерилизации и охлаждения до температуры сквашивания помещали в стерильный лабораторный культиватор из стекла объемом 0,7 л., снабженный тремя электродами, для измерения рН и Еh. Измерения рН и Еh cреды выполняли одновременно при включенной мешалке отечественным прецизионным иономером «Эксперт-003» с хлорсеребряным электродом сравнения и двумя измерительными электродами. Температуру культуральной среды поддерживали на заданном уровне с помощью ультратермостата. Экспериментальные исследования проводили с использованием нового рН-метрического способа изучения роста и кислотообразования лактобактерий и бифидобактерий. Суть нового способа - кратко изложенная в нашей предшествующей публикации 2010г., [9], заключается в следующем: 1. Предварительное определение рН-метриче-ским титрованием буферности (b) питательной среды, выбранной для культивирования лактобактерий (бифидобактерий). Оригинальная авторская методика определения буферности молока и других питательных сред опубликована в юбилейном сборнике научных трудов ГНУ ВНИМИ [10], поэтому уравнение расчёта величины буферности среды b = ΔАt[0T] /(-ΔрНt), приведенное ниже, приводим без дополнительных комментариев: уравнение расчёта буферности среды: b = 1000∙N1∙V1 / (-ΔрН) · (V0 + V1). (2) В 2002 г. нами экспериментально (эмпирически) установлено, что прирост титруемой кислотности (ΔАt) исследуемой питательной среды, (например, в результате роста лактобактерий или в результате внесения в неё раствора кислоты) прямо пропорционален взаимосвязанной равновесной убыли рН среды, (-ΔрНt): неизвестная ранее эмпирическая зависимость: ΔАt[ºT] = b·(-ΔрНt), (3) формула расчёта скорости кислотообразования культуры: ΔАt /Dt [ºT/ч] = b∙(- DрНt /Dt), (4) формула Марьина: ∆Хt [КОЕ/мл] = 0,5·108 · ΔАt[0T] = 0,5·108 · b · ∙ (-∆рНt), (-ΔрНt) = ΔАt[0T] / b = ∆Хt [КОЕ/мл] / / 0,5·108 · b,(5) где ∆Хt - прирост концентрации лактобактерий в культуральной среде за t часов культивирования, ∆Аt - одновременный прирост титруемой кислотности культуральной среды, (-∆рНt) - одновременная убыль рН среды, b - буферность культуральной среды. 2.Непрерывный мониторинг рН культуральной среды и построение рН-метрической кривой зависимости изменения рН среды от продолжительности процесса культивирования (t) , (т.е. графика в нормальных (Декартовых) координатах зависимости (-∆рН) среды от t). На графике ось рН (ордината) должна быть направлена вниз, тогда рН-метрическая кривая однотипна кривой роста культуры (см. уравнение (1) и отличается от неё только масштабом, если величина b=const. рН-метрическую кривую обычно строят во время культивирования, чтобы по изменению ее конфигурации в ходе культивирования наблюдать и анализировать в режиме реального времени изменение режима и скорости роста культуры. 3. Расчёт скоростей кислотообразования культуральной среды (DА/Dt) по уравнению (4) для каждого из исследуемых участков рН-метрической кривой и построение кривой скоростей кислотообразования (и роста) культуры, т.е. графика зависимости (DА/Dt) от (t) в нормальных (Декартовых) координатах. 4. Расчёт скоростей роста культуры DХ/Dt, по формуле Марьина (1), на всех изучаемых стадиях роста культуры лакто- или бифидобактерий: Объектом теоретических исследований являлись теория роста и пассивации активных клеток и механизм периодической ступенчатой активации пассивных клеток культуры молочнокислых микроорганизмов в процессе роста культуры, который в молоке, как правило, протекает в режиме линейного роста. Только культура Str. thermophilus после лаг-фазы растёт в молоке в фазе экспоненциального роста, которую затем сменяет новая фаза линейного роста культуры, открытая В.А.Марьиным в 2002 г.[5,7,10,11]. Результаты и их обсуждение В качестве примера на рис.3 представлена рН-метрическая кривая роста периодической культуры бифидобактерий (B. longum) в гидролизатно-молочной питательной среде[12]. Рис.3. Линейный (ступенчатый) рост культуры бифидобактерий в среде Биос (5% СВ) + cухое обезжиренное молоко (5% СВ) + сухая молочная сыворотка (5 % СВ) РН-метрическая кривая линейного роста и кислотообразования культуры лактобактерий представляет собой последовательность соединённых в одну ломаную линию прямолинейных участков (ступеней) роста. В границах каждого прямолинейного участка (ступени) скорость кислотообразования и роста культуры остаются неизменными. Bозрастание скорости кислотообразования и скорости линейного роста культуры происходит ступенчато (скачком) в момент перехода от одной ступени - к другой. На первой ступени культивирования скорость роста и кислотообразования культуры бифидобактерий составила 0,46 ºТ/ч и оставалась неизменной в течение 3,5 часа. Затем скорость роста и кислотообразования (в момент перехода ко второй ступени) ступенчато (скачком) возросла до 0,47 ºТ/ч и рост культуры продолжился с этой новой (неизменной в границах ступени) скоростью кислотообразования. Наконец (после 5,5 ч культивирования), произошло очередное ступенчатое (двукратное) увеличение скорости кислотообразования (и роста) культуры (до 1,0 ºТ/ч = 5∙107[KOE/мл ∙ ч] (формула Марьина (1)). Затем скорость роста и кислотообразования культуры снова оставалась неизменной (в границах третьей ступени) на протяжении 1 часа до нового резкого ступенчатого возрастания в 1,5 раза (до 1,5 ºТ/ч = 7, 5 ∙107 КОЕ/мл ∙ ч) и так далее. Отметим, что наклонные прямолинейные последовательно расположенные участки рН-метрической кривой, соответствующие скорости кислотообразования культуры 0,46 и 0,47 ºТ/ч, уже различимы по углу наклона, т.е. чувствительность рН-метрического способа достаточно высока. При этом приросту скорости кислотообразования на 0,01 0Т/ч соответствует одновременный прирост скорости роста культуры на 5 ∙105 [КОЕ / мл ∙ ч], который трудно определить с той же чувствительностью любым другим методом. В результате исследований роста лакто- и бифидобактерий новым рН-метрическим способом во ВНИМИ в октябре 2002г., было впервые установлено, что режим линейного роста культуры лакто- или бифидобактерий в молоке и в гидролизатно-молочных питательных средах является естественным, а не аномальным режимом роста и самопроизвольно устанавливается с самого начала лаг-фазы, которая всегда протекает только в режиме линейного роста [5, 11]. Одновременно впервые была выявлена новая характерная (неотъемлемая) особенность режима линейного роста периодической культуры лакто- или бифидобактерий: периодическое ступенчатое (скачком) изменение скорости роста и кислотообразования культуры в ходе культивирования [5, с. 176-177]. Известно, что скорость роста культуры пропорциональна концентрации растущих (активных) клеток в культуральной среде. Разумеется, общая концентрация живых клеток растущей культуры лакто- или бифидобактерий не может за 1 минуту возрасти в 1,5-2 раза. Однако концентрация активных (растущих, делящихся) клеток может ступенчато, скачком, возрасти вдвое без увеличения общей концентрации живых клеток в результате естественного разукрупнения (деления) растущих цепочек клеток лактобактерий, согласно предложенной нами новой схеме роста цепочек лактобактерий, представленной на рис. 4б [12]. В 2004 г. во ВНИМИ предложена новая концепция теории пассивации (образования покоящихся форм) активных клеток растущей культуры микроорганизмов и на ее основе создана новая модель линейного роста лактобактерий [11]. При микроскопировании растущей в молоке культуры Str. thermophilus в культуральной среде микробиологами было обнаружено большое количество цепочек микробных клеток. Поэтому в основу новой модели линейного роста лактобактерий нами положен рост концевых (крайних) клеток, их растущих цепочек. Суть новой модели понятна из схемы роста цепочек клеток Str. thermophilus, приведенной на рис. 4а. Рис.4. Схема роста цепочек клеток Str. thermophilus: а) при делении концевых клеток цепочек; б) при распаде длинной цепочки на укороченную цепочку + диплококк Клетки внутри каждой цепочки пассивированы. Они остаются живыми, но временно перестают размножаться. Размножаются (путем бинарного деления) только две концевые клетки любой цепочки, а весь прирост новых клеток попадает внутрь цепочек и пассивируется (см. рис.4а). В данном случае при линейном росте периодической культуры скорость пассивации клеток совпадает cо скоростью их роста путём бинарного деления. Забегая вперёд, отметим, что скорость ступенчатой пассивации активных клеток периодической культуры в фазе линейного роста может быть в 40 (и более) раз выше скорости их роста путем бинарного деления. При росте цепочек микроорганизмов количество концевых растущих активных клеток остается постоянным. Новая модель логично объясняет, почему при линейном росте культуры скорость роста микроорганизмов остается постоянной на протяжении длительного периода культивирования (см. рис. 4а). Продуцируемые микроорганизмами ферменты непрерывно гидролизуют компоненты питательной среды, постепенно делая их пригодными для непосредственного потребления растущими клетками культуры. Растущая культура микроорганизмов постепенно улучшает качество питательной среды (до некоторого требуемого микроорганизмам уровня) и затем, когда требуемый уровень достигнут, инициирует процесс активации части пассивных клеток путём быстрого одновременного распада (деления) длинных цепочек с одновременным увеличением концентрации активных клеток в культуральной среде, (см. рис. 4б), которое проявляется в одновременном ступенчатом увеличении скорости роста культуры [12]. При распаде длинной цепочки «концевой» диплококк, состоящий из двух активных клеток, «уходит» из состава цепочки, укорачивая ее на две клетки. В результате количество активных клеток ступенчато скачком возрастает вдвое (менее чем за минуту), а суммарное количество живых клеток не изменяется! Ступенчатое возрастание скорости роста периодической культуры в целом, которое мы наблюдаем на рис.4, означает, что массовый распад цепочек происходит практически одновременно во всём объёме культуральной среды [12]. Особо отметим, что увеличение скорости роста культуры происходит в результате процесса самоактивации части пассивных клеток культуры. Образно говоря, пассивные (покоящиеся) клетки - это не пассивный балласт, а мобильный резерв культуры, который она активно использует для повышения скорости своего роста при улучшении условий культивирования. Без активного участия пассивных клеток отмеченное выше ступенчатое (резкое) увеличение скорости роста и кислотообразования культуры бифидобактерий, например, с 0,47- до 1,0 ºТ/ч (т.е. более чем вдвое), было бы просто невозможно! В своей монографии в разделе 7.1«Определение понятия мёртвых и покоящихся клеток»С.Дж.Перт пришёл к прямо противоположному (необоснованному) выводу: «В растущей культуре покоящиеся и мёртвые клетки ведут себя одинаково, не внося никакого вклада в рост популяции» [3, с.75]. С учётом сказанного выше этот вывод С.Дж.Перта мы оставим без дополнительных комментариев. В качестве другого примера рассмотрим приведенную на рис.5 рН-метрическую кривую роста культуры L. acidophilus со ступенчатой пассивацией 50% активных клеток в фазе линейного роста, в результате которой скорость роста и кислотообразования культуры снизилась вдвое: с 33 до 16,5 ºТ/ч. Рис. 5. рН-метрическая кривая роста культуры L. аcidophilus в среде Vis-star (5%СВ)+молочная сыворотка (7,5%СВ) На протяжении первых 40 минут культивирования (рис. 5) (в период лаг-фазы) скорость роста и кислотообразования культуры оставалась неизменной и составила 4,1 ºТ/ч (=2,05∙108 КОЕ/мл∙ч). Прямолинейность начального участка рН-метрической кривой свидетельствует о режиме линейного роста культуры в период лаг-фазы, после которой началась фаза экспоненциального роста (единственный криволинейный участок рН-метрической кривой), продолжавшаяся 2 часа. Скорость роста и кислотообразования культуры за 2 часа экспоненциального роста возросли в 8 раз (до 33 ºТ/ч), а рН среды снизился до рН=5,8. Затем наступила фаза линейного роста со скоростью кислотообразования культуры 33 ºТ/ч, которая оставалась неизменной в течение 0,5 часа. В результате продуцирования молочной кислоты в культуральной среде растущими молочнокислыми микроорганизмами рН культуральной среды непрерывно снижался и в начале четвёртого часа культивирования снизился до рН=5,35. В этот момент скорость роста и кислотообразования культуры (в фазе линейного роста) ступенчато (скачком) снизилась вдвое (до 16,5 ºТ/ч) из-за чрезмерно низкого уровня рН культуральной среды. Величина µ в процессе культивирования изменяется несущественно и никогда не снижается скачком. Поэтому ступенчатое (резкое) снижение скорости роста культуры (dXА/dt)t обусловлено не снижением величины µ, а ступенчатым снижением концентрации активных клеток (XА)t в культуральной среде: первое концептуальное уравнение: (dXА/dt)t = µ· (XА)t (6) Скорость ступенчатой пассивации активных клеток периодической культуры была столь высока, что менее чем за 1 минуту концентрация активных клеток растущей культуры уменьшилась вдвое. Для аналогичного увеличения вдвое концентрации активных клеток L. acidophilus в культуральной среде в режиме бинарного деления необходимо 43,5 мин, т.е. в 40 раз больше времени. Таким образом, вопреки мнению С.Дж.Перта [3], при росте периодической культуры скорость пассивации активных клеток может во много раз превышать скорость бинарного удвоения концентрации растущих (активных) клеток в культуральной среде. Отмеченное ступенчатое снижение скорости роста периодической культуры L. acidophilus в фазе линейного роста не было обусловлено истощением потребляемых микроорганизмами компонентов субстрата питательной среды, концентрация которых в культуральной среде оставалась на достаточно высоком уровне. Чтобы доказать это, рассмотрим аналогичную рН-метрическую кривую роста периодической культуры Str. thermophilus в той же питательной среде, приведенную на рис.6. Рис. 6. рН-метрическая кривая роста периодической культуры Str. Thermophiles в питательной среде Vis-star (5%СВ)+ сыворотка (7,5%СВ) После 50 минут лаг-фазы наступила фаза экспоненциального роста культуры, (в середине рис. 6), которая продолжалась 1,6 час. В результате скорость кислотообразования культуры Str. thermophilus в конце фазы экспоненциального роста и в начале фазы линейного роста (при рН=5,95) достигла максимума и составила 61 ºТ/ч. Когда рН культуральной среды снизился до уровня рН=5,6, скорость кислотообразования (и роста) культуры ступенчато снизилась в 1,42 раза - до 43 ºТ/ч. В результате раскисления культуральной среды (25%-ным раствором аммиака) до оптимального уровня рН=6,8 скорость кислотообразования и роста культуры (менее чем за 1 минуту) ступенчато возросла более чем вдвое - до 90 ºТ/ч и в 1,5 раза превысила достигнутую ранее максимальную скоростькак экспоненциального, так и линейного роста культуры. Концентрация субстрата при раскислении не изменяется, и, очевидно, основную роль в регулировании скорости кислотообразования (и роста) растущей культуры лактобактерий играет величина активной кислотности (рН) культуральной среды. Описанное в данном примере ступенчатое (скачком) возрастание скорости роста и кислотообразования культуры Str. thermophilus в результате раскисления среды до оптимального уровня рН (=6,8) обусловлено ступенчатой активацией части пассивных клеток культуры при улучшении условий культивирования. Выдающийся микробиолог доктор биологических наук Н. С. Королёва (1926-2010) в конце прошлого века с огорчением отмечала, что микробиология молочнокислых микроорганизмов находится как бы на обочине основного пути развития общей микробиологии. Тем не менее, в нашей новой работе авторам впервые удалось найти путь решения сложной комплексной научной проблемы роста, пассивации и активации клеток растущей культуры микроорганизмов, используя при этом преимущества специфики роста и кислотообразования именно молочнокислых микроорганизмов. Специфика роста молочнокислых микроорганизмов заключается в том, что только активные (растущие) клетки лактобактерий продуцируют молочную кислоту. Пассивные (покоящиеся) клетки лактобактерий, по определению, не растут и кислоту не продуцируют. Отмеченное различие в кислотообразовании позволяет чётко и однозначно разграничить активные и пассивные клетки лактобактерий, тогда как при изучении роста других микроорганизмов такое разграничение зачастую едва ли возможно. В нашей предыдущей работе впервые установлено, что концентрация и доля пассивных клеток в культуральной среде непрерывно возрастают на всём протяжении экспоненциального роста культуры E. соli. Однако при культивировании большинства видов лактобактерий в молоке фаза экспоненциального роста клеток, как правило, отсутствует, и рост клеток Lac. lactis, Lbm. bulgaricus и L. acidophilus протекает только в режиме (фазе) линейного роста [7,9,13]. При этом и процесс пассивации активных клеток культуры, растущей в режиме линейного роста, протекает не так, как при экспоненциальном росте культуры. В нашем новом исследовании впервые найдено решение проблемы комплексного анализа роста и пассивации клеток лактобактерий при любом режиме роста и на всех стадиях роста культуры лактобактерий. Впервые теоретически обоснованы и рассчитаны одновременные концентрации активных и пассивных клеток лактобактерий в культуральной среде на всём протяжении культивирования. Скорость увеличения концентрации активных клеток культуры лактобактерий в культуральной среде (ΔХА/Δt) прямо пропорциональна одновременной скорости увеличения титруемой кислотности среды, т.е. скорости кислотообразования культуры (∆Аt/Δt). Поэтому концентрацию ХА активных клеток лактобактерий в культуральной среде можно определить по скорости кислотообразования (ΔAt/Δt) культуры. согласно первому концептуальному уравнению: dXА/dt = µ · XА [= ΔХА / Δt ] , (6) ХА [КОЕ/мл] = (ΔХА / Δt) / µ ,(7) формула Марьина: ΔХА[КОЕ/мл] = 0,5 ∙108 ∙ ΔА[ºТ], формула расчёта величины (ХА)t: (ХА)t [КОЕ/мл] = (5 ∙107/µ) · (ΔАt /Δt) (8) Концентрация (ХА)t активных клеток лактобактерий в культуральной среде прямо пропорциональна скорости кислотообразования растущей культуры лактобактерий. Определяя в отбираемых из культиватора пробах культуральной среды концентрацию (Хобщ)t живых клеток лактобактерий (= активных + пассивных), можно по уравнениям (9) и (10) рассчитать доли активных (α) и пассивных (β) клеток в культуральной среде, а по уравнениям (11) и (12) - соответствующие концентрации активных (ХА)t и пассивных клеток (Xпасс)t : доля активных клеток в культуральной среде: αt = (ХА/Хобщ)t, (9) доля пассивных клеток в культуральной среде: βt = 1- αt , (10) концентрация активных клеток в культуральной среде: (ХА)t = αt · (Хобщ)t,(11) концентрация пассивных клеток в культуральной среде: (Хпасс)t = βt · (Хобщ)t.(12) Результаты одновременного (параллельного) мониторинга параметров Аt и (Хобщ)t на всём протяжении процесса культивирования в молоке культуры Lac. lactis в культиваторе ВНИМИ приведены на рис.7 [14]. Рис.7. Динамика изменения кислотности сквашиваемого молока и накопления клеток при культивировании молочнокислых лактококков: 1- концентрация живых клеток Хобщ [КОЕ/мл] в культуральной среде, 2 - возрастающая титруемая кислотность А [ºТ] сквашиваемого молока На рис. 7 сопоставлены кривая мониторинга (1) изменяющейся концентрации (Хобщ)t [ КОЕ/мл] живых клеток молочнокислых лактококков в культуральной среде на всём протяжении культивирования Lac. lactis и кривая (2) одновременно возрастающей титруемой кислотности культуральной среды Аt[оТ]. Нами установлено, что при культивировании в молоке и молочных питательных средах клеток Lac. lactis фаза экспоненциального роста отсутствует, и основной фазой роста культуры является фаза линейного роста, которая официально до сих пор не признана биологами [7]. В период лаг-фазы клетки Lac. lactis растут в режиме линейного роста. Графическим анализом кривых мониторинга на рис.7 мы определили скорость кислотообразования культуры (ΔАt /Δt) для любого из анализируемых значений параметра Аt и одновременную скорость роста концентрации живых клеток культуры (ΔХобщ/Δt) , что позволило впервые рассчитать концентрацию активных клеток (ХА)t в культуральной среде по уравнению (11) и концентрацию пассивных клеток (Хпасс)t по уравнению (12) на всех стадиях роста культуры при получении жидкого бактериального концентрата. Величина удельной скорости роста (µ) клеток Lac. lactis, определенная нами ранее [11], равна: µ = 0,64 ч-1. Через 4 часа культивирования скорость кислотообразования культуры составила (ΔАt / Δt)4 = 9,1ºТ/ч. Концентрация активных клеток (ХА)4 = (5∙107/µ) ∙ ∙9,1 = (5∙107/0,64) ∙ 9,1 = 7,1∙ 108 [КОЕ/мл] (при общей концентрации живых клеток культуры (Хобщ)4 =7,5∙108[КОЕ/мл]; α4=0,95; β4=0,05; (Хпасс)4= =0,4∙108[КОЕ/мл]. Через 10 часов культивирования скорость кислотообразования культуры снизилась в 2,3 раза до (ΔАt/Δt)10 = 4,0ºТ/ч. Согласно уравнению (11), концентрация активных клеток Lac. lactis в культуральной среде (за 6 часов) также снизилась в 2,3 раза до (ХА)10 = 3,1∙108 [КОЕ/мл]. Одновременно общая концентрации живых клеток растущей культуры возросла почти вдвое - до (Хобщ)10 = 14∙108[КОЕ/мл]; α10 = 0,22; β10 = 0,78; (Хпасс)10 = 11∙108[КОЕ/мл]. Отметим снижение величины α в 4,3 раза и возрастание (в 15,6 раза!) величины β. Через 18 часов культивирования скорость кислотообразования культуры Lac. lactis снизилась до 2,1ºТ/ч. При этом концентрация активных клеток культуры (за 8 часов) дополнительно снизилась в два раза до (ХА)18 = 1,65∙108 [КОЕ/мл], а общая концентрация живых клеток в культуральной среде, возросла до максимума и перестала возрастать: (Хобщ)18 = 17,4∙108[КОЕ/мл]; α18 = 0,095; β18 = 0,905; (Хпасс)18 =16,5 ∙ 108 [КОЕ/мл]. При производстве бактериального концентрата процесс сквашивания питательной среды растущей культурой лактобактерий продолжают до начала стационарной фазы роста культуры, когда концентрация живых клеток в культуральной среде достигает определённого максимума и перестаёт возрастать. Согласно кривой мониторинга Хобщ, приведенной на рис. 7, в момент максимума (tmax = 18ч.) общая концентрация живых клеток Lac. lactis в жидком бактериальном концентрате составила Хобщ =17,4∙108[КОЕ/мл]. Отметим, что 90% живых клеток жидкого бактериального концентрата были пассивными и лишь 10% - активными. Исследования Л.А. Банниковой будут нами продолжены с использованием современных методов исследований, чтобы детально проанализировать скорости роста и пассивации клеток других видов лакто- и бифидобактерий при производстве бактериальных концентратов для молочной отрасли и научно обосновать оптимальную продолжительность процесса культивирования.
1. Schaeffer, P. Compt. rend. / P. Schaeffer. - 1949. - № 228. - P. 277-279.
2. Monod, J. The growth of bacterial cultures / J.Monod // Annual review of microbiology. - 1949. - № 3. - p. 386.
3. Pert, S. Dzh. Osnovy kul'tivirovaniya mikroorganizmov i kletok / S. Dzh. Pert. - L.; Oksford; Edinburg; Mel'burn, 1975; M.: Mir, 1978. - 261 c.
4. Mar'in, V.A. Novyy rN-metricheskiy metod izucheniya rosta laktobakteriy i bifidobakteriy / V.A. Mar'in, E.I. Raydna // Kislomolochnye produkty - tehnologii i pitanie: sb. tez. regional'noy konf. MMF. 17.05.2007. - M., 2007. - S. 323-324.
5. Mar'in, V.A. Novaya faza rosta mikroorganizmov - faza lineynogo rosta / V.A. Mar'in // Nano- i biotehnologiya proizvodstva produktov funkcional'nogo naznacheniya: sb. dokl. Mezhdunar. nauch.-prakt. konf. Rossel'hozakademii. 10-12.10.2007. - Krasnodarskiy NII hraneniya i pererabotki s.-h prod. - Krasnodar, 2007. - S. 176-177.
6. Mar'in, V.A. Opredelenie rezhimov rosta laktobakteriy novym rN- metricheskim metodom po narastaniyu kislotnosti skvashivaemoy sredy / V.A. Mar'in, E.I. Raydna // Integraciya fundamental'nyh i prikladnyh issledovaniy - osnova razvitiya sovremennyh agrarno-pischevyh tehnologiy: sb. materialov nauchno-prakt. konf. 4-6 sentyabrya 2007 g. - Uglich. GNU VNIIMS Rossel'hozakademii, 2007. - S. 209-212.
7. Mar'in V.A. Skorost' gidroliza belkov bakterial'nymi fermentami limitiruet skorost' rosta laktobakteriy v molochnyh pitatel'nyh sredah / V.A. Mar'in, E.I. Raydna // Mikrobnye biokatalizatory i ih rol' v nano- i biotehnologiyah: mater. 4-go mezhd. nauch.-prakt. simpoziuma, 14-15 maya 2008 g. - M.: GNU VNII pischevoy biotehnologii Rossel'hozakademii, 2008. - S. 92-97.
8. Mar'in V.A. Novaya zakonomernost' rosta kul'tury bifidobakteriy (laktobakteriy). Formula Mar'ina / V.A. Mar'in // Principy pischevoy kombinatoriki - osnova modelirovaniya polikomponentnyh pischevyh produktov: sb. mat. vseross. nauch.- prakt. konf.- Uglich. GNU VNIIMS Rossel'hozakademii. 8-9.09.2010. - Rossel'hozakademiya, 2010. - S. 165-168.
9. Mar'in, V.A. Issledovanie shem posledovatel'nosti faz rosta periodicheskoy kul'tury bifidobakteriy ili laktobakteriy / V.A. Mar'in, D.V. Haritonov // Tehnika i tehnologiya pischevyh proizvodstv. - 2010. - № 4. - S. 24-28.
10. Mar'in, V.A. Novyy sposob opredeleniya udel'noy skorosti rosta (µ) laktobakteriy i bifidobakteriy / V.A. Mar'in // Nauchnoe obespechenie molochnoy promyshlennosti (VNIMI - 80 let): sb. nauch. tr. - M.: GNU VNIMI, 2009. - S. 274-281.
11. Mar'in, V.A. Novaya model' lineynogo rosta laktobakteriy v molochnyh sredah/ V.A. Mar'in, E.I. Raydna // Kislomolochnye produkty - tehnologii i pitanie: sb. tez. reg. konf. MMF. 17 maya 2007 g. - M., 2007. - S. 321-322.
12. Mar'in, V.A. Nachal'nyy period rosta kul'tury laktobakteriy i bifidobakteriy / V.A. Mar'in // Nauchnoe obespechenie molochnoy promyshlennosti: sb. nauchn. trudov. M. GNU VNIMI, 2010. - S.136-142.
13. Mar'in, V.A. Dvadcatikratnoe uvelichenie urozhaynosti zhidkogo i suhogo koncentrata bifidobakteriy (do 5·1011 KOE/g) obogascheniem pitatel'noy sredy kompleksom makro- i mikroelementov / V.A. Mar'in // Principy pischevoy kombinatoriki - osnova modelirovaniya polikomponentnyh pischevyh produktov: sb. mat. Vseross. nauch.-prakt. konf.- Uglich, GNU VNIIMS Rossel'hozakademii, 8-9 sentyabrya 2010 g. - Uglich, 2010. - S. 162-165.
14. Bannikova, L.A. Selekciya molochnokislyh bakteriy i ih primenenie v molochnoy promyshlennosti / L.A. Bannikova // Pischevaya promyshlennost'. - M., 1975. - 216 s.
